Médodos ABI 3700 |
PCR de colônia
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Transferir
para um erlenmeyer o volume necessário de meio Terrific Broth (Life
Technologies #22711-022) contendo ampicilina na concentração final de 100 mg/ml (diluição 1:1000 de uma
solução 100 mg/ml);
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Distribuir
100 ml/poço
em microplacas de cultura;
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Picar
colônias brancas e isoladas com palitos estéreis e inocular os poços com meio;
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Incubar
em estufa a 37°C por aproximadamente 14 horas (até o meio ficar turvo com pouco
sedimento de bactéria). Não ultrapassar mais do que 16 horas de incubação;
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Após
o período de incubação, adicionar 100 mL de glicerol 30% estéril por
poço;
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Preparar
um mix para 100 reações de PCR em gelo:
Primer F (20 pmol/mL) |
13,0 mL |
Primer R (20 pmol/mL) |
13,0 mL |
dNTP (25mM) |
7,5 mL |
MgCl2 (50mM) |
45,0 mL |
10x Taq buffer |
150,0 mL |
Taq DNA pol (Biolase 5U/mL) |
10,0 mL |
H2O milli Q |
1.261,5 mL |
Total |
15 mL/reação |
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Distribuir
15 mL do mix por poço na microplaca;
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Flambar
um replicador de 96 agulhas (Boekel) com álcool, colocá-lo na microplaca de
cultura, misturar bem e transferir para placa de PCR (atentar para a correta orientação das placas),
misturar e flambar novamente;
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Centrifugar
a microplaca de PCR por 1 pulso até 700 g;
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Colocar
em termociclador e proceder com o seguinte programa:
95°C........4
min.
95°C........45 seg.
55°C........45
seg. 40x
72°C........1
min.
72°C........5
min.
4°C.........¥ min.
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Preparar
um gel de agarose 1,2% em TBE;
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Em
uma microplaca de plástico adicionar 3 ml da reação de PCR, 2 mL de H2O milliQ e 1 mL de tampão de amostra 6x. Aplicar no gel duas
fileiras de 8 amostras por microplaca;
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Centrifugar
por 1 pulso de 700 g, desnaturar as amostras a 65°C por 5 minutos e aplicar no
gel (Sunrise 96 – Life Technologies). Correr a 100V por cerca de 30 minutos;
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Diluir
o DNA resultante do PCR de colônia 1:5 em água (60 ml por reação). As amostras
previamente analisadas em gel devem ser diluídas com menor volume (48 ml por reação);
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Homogeneizar
as amostras;
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Preparar
um mix para 100 reações de PCR de seqüenciamento em gelo:
Primer F ou R (15,0 pmoles/mL) |
200 mL |
ABI BigDye Dye Terminator v.2 |
200 mL |
2,5x
dilution buffer |
600 mL |
H2O milliQ |
700 mL |
Total |
17,0 mL/reação |
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Distribuir
17 mL do mix em cada poço de uma microplaca de PCR (ABI
MicroAmp Optical 96 well Reaction Plate N801-0560) para seqüenciamento
(especial para o ABI 3700);
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Adicionar
3 mL de DNA do PCR de colônia em cada poço (já diluído
1:5), homogeneizando bem com a pipeta
multicanal antes e depois da transferência;
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Centrifugar
por 1 pulso a 700 g;
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Tampar
a microplaca com selo adesivo ou tampa de borracha;
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Proceder
ao PCR de seqüenciamento em termociclador ABI 9600 ou ABI 9700 (com rampagem
lenta) segundo o programa abaixo:
96°C .......10 seg.
52°C …...20 seg.
40x
60°C ........4 min.
4°C .......... ¥
Remoção dos terminadores
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Adicionar 20 mL de água por poço;
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Adicionar
60 ml de
isopropanol 100% por poço;
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Homogeneizar
vigorosamente;
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Incubar
por 15 minutos à temperatura ambiente;
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Centrifugar
a microplaca a 3.000 g por 30 minutos (ou 1.200 g/ 50 minutos) a 20oC;
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Inverter
a microplaca, descartar o sobrenadante e dar um pulso de centrifugação até 700
g com a microplaca invertida sobre papel absorvente;
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Adicionar
150 mL de isopropanol 70% por poço. Não vortexar;
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Centrifugar
a microplaca a 3.000 g por 10 min. a 20oC;
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Inverter
a microplaca, descartar o sobrenadante e dar um pulso de centrifugação até 700
g com a microplaca invertida sobre papel absorvente;
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Secar
a microplaca por 10 minutos em estufa a 37oC para a evaporar o
isopropanol residual;
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Selar
a microplaca com adesivo (ABgene Adhesive Plate Seal #AB-0580);
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Armazenar
a microplaca coberta por papel alumínio em freezer –20oC até o
momento do uso.
Apêndice
Primer F: CGC CAG GGT
TTT CCC AGT CAC GAC – 24-mer
Primer R: TTT CAC ACA
GGA AAC AGC TAT GAC – 24-mer
2,5x dilution buffer:
200 mM Tris-Cl pH 9,0; 5,0 mM MgCl2.